
【產(chǎn)品描述】
貨號(hào):G180
英文名稱:Green Retrobeads™ IX
中文名稱:綠色逆向示蹤熒光微粒(綠色逆行示蹤微球)
品牌:Lumafluor, Inc.(美國(guó))
規(guī)格:100 µl(液體懸浮液,濃縮原液)
熒光顏色:綠色
激發(fā)波長(zhǎng)(Excitation):約 480 nm
發(fā)射波長(zhǎng)(Emission):約 520 nm
核心成分:聚苯乙烯/聚甲基丙烯酸甲酯基微球,表面共價(jià)偶聯(lián)綠色熒光染料
溶劑體系:水性懸浮液,含表面活性劑以維持分散穩(wěn)定性
微球直徑:約 0.02–0.2 µm(典型值,具體以批次檢測(cè)報(bào)告為準(zhǔn))
濃度:約 10% 固體含量(w/v),可根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求稀釋
適用物種:大鼠、小鼠、非人靈長(zhǎng)類及其他哺乳動(dòng)物
應(yīng)用領(lǐng)域:神經(jīng)科學(xué)、神經(jīng)解剖學(xué)、神經(jīng)環(huán)路追蹤、腦圖譜繪制、神經(jīng)元連接組學(xué)、藥物遞送研究
儲(chǔ)存溫度:4°C 避光保存
有效期:自生產(chǎn)日期起 12 個(gè)月(具體以瓶身標(biāo)注為準(zhǔn))
原產(chǎn)國(guó):美國(guó)
運(yùn)輸條件:冷藏運(yùn)輸(4–8°C)
安全提示:僅供科研使用,非臨床用途;操作需佩戴防護(hù)手套與護(hù)目鏡
中國(guó)區(qū)域供應(yīng)商:上海起發(fā)實(shí)驗(yàn)試劑有限公司

【產(chǎn)品特點(diǎn)】
1. 高熒光強(qiáng)度與高信噪比
微球內(nèi)部包埋高濃度綠色熒光染料,熒光信號(hào)強(qiáng),背景自發(fā)熒光低,在熒光顯微鏡下呈現(xiàn)明亮綠色熒光,便于低倍鏡掃描與高倍鏡精確定位。
2. 逆向(逆行)運(yùn)輸效率高
微粒尺寸經(jīng)優(yōu)化設(shè)計(jì),可被神經(jīng)末梢高效內(nèi)吞,并沿軸突逆向運(yùn)輸至胞體,實(shí)現(xiàn)"從靶區(qū)反推起源"的示蹤策略,標(biāo)記效率穩(wěn)定可靠。
3. 長(zhǎng)期體內(nèi)穩(wěn)定性
熒光信號(hào)在固定組織中可保持?jǐn)?shù)月不褪,適合長(zhǎng)時(shí)程實(shí)驗(yàn)(數(shù)周至數(shù)月)。經(jīng)醛類固定后熒光保留良好,兼容石蠟包埋與冰凍切片。
4. 低擴(kuò)散、低泄漏
微球被神經(jīng)元內(nèi)吞后不易逸出細(xì)胞膜,注射位點(diǎn)周圍擴(kuò)散范圍小,標(biāo)記邊界清晰,可有效減少"假陽(yáng)性"誤判。
5. 與紅色示蹤劑高度互補(bǔ)
綠色熒光通道(FITC/GFP 通道)與 Lumafluor 紅色示蹤微球(如 Red Retrobeads™ IX)光譜無(wú)重疊,可在同一組織中實(shí)現(xiàn) 雙色或多色逆向示蹤實(shí)驗(yàn)。
6. 即用型制劑
產(chǎn)品為即用型液體懸浮液,無(wú)需溶解、復(fù)溶或復(fù)雜前處理,開(kāi)瓶后 短暫渦旋混勻即可上樣,節(jié)省實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)備時(shí)間。
7. 表面化學(xué)性質(zhì)可控
微球表面經(jīng)過(guò)修飾處理,具有適度的親水性與表面電荷,既保證注射順暢不易堵塞針頭,又促進(jìn)神經(jīng)末梢的有效攝取。
【儲(chǔ)存條件】
1. 推薦儲(chǔ)存溫度:4°C ± 2°C(標(biāo)準(zhǔn)冰箱冷藏室)
2. 避光保存:建議使用鋁箔包裹瓶身或存放于不透光容器中,避免熒光染料因光照而光漂白
3. 嚴(yán)禁冷凍:冷凍會(huì)導(dǎo)致微球聚集、破裂或熒光淬滅, 解凍后可能出現(xiàn)不可逆的沉淀
4. 防止干燥:使用后務(wù)必?cái)Q緊瓶蓋,避免溶劑蒸發(fā)導(dǎo)致濃度改變或微球干結(jié)
5. 潔凈操作:每次取用前短暫渦旋(5–10 秒)混勻懸浮液;建議使用無(wú)菌槍頭,避免交叉污染
6. 有效期:開(kāi)封后建議在 6 個(gè)月內(nèi)使用完畢;未開(kāi)封狀態(tài)下按標(biāo)注有效期執(zhí)行
【工作原理】
G180 的工作原理基于"逆向軸突運(yùn)輸"(Retrograde Axonal Transport)機(jī)制:
第一步 — 注射與沉積
將 G180 懸浮液注射至目標(biāo)腦區(qū)或外周神經(jīng)靶區(qū)。微球以高濃度懸浮狀態(tài)沉積在注射位點(diǎn)周圍的組織間隙中。
第二步 — 神經(jīng)末梢攝取
沉積在靶區(qū)的微球被該區(qū)域神經(jīng)末梢通過(guò)胞吞作用(endocytosis)主動(dòng)攝取。微球尺寸經(jīng)過(guò)優(yōu)化,既足夠小以進(jìn)入內(nèi)吞途徑,又足夠大以避免快速被胞吐排出。
第三步 — 逆向運(yùn)輸至胞體
被攝取的微球包裹于內(nèi)體/溶酶體囊泡中,借助微管馬達(dá)蛋白(dynein 復(fù)合物)沿軸突以逆向方向運(yùn)輸,最終抵達(dá)神經(jīng)元的胞體(soma),在細(xì)胞核周圍富集。
第四步 — 熒光檢測(cè)
攜帶綠色熒光微球的神經(jīng)元胞體在熒光顯微鏡下呈現(xiàn)明亮綠色熒光。由于微球不透過(guò)細(xì)胞膜,信號(hào)被"鎖定"在陽(yáng)性神經(jīng)元內(nèi)部,背景干凈。
研究者可據(jù)此:
· 確定支配該靶區(qū)的所有上游神經(jīng)元群體
· 繪制腦區(qū)之間的連接圖譜
· 結(jié)合其他示蹤劑進(jìn)行多色環(huán)路分析
第五步 — 長(zhǎng)期保留
微球在神經(jīng)元胞體內(nèi)可長(zhǎng)期駐留(數(shù)周至數(shù)月),熒光信號(hào)衰減緩慢,適合長(zhǎng)時(shí)程追蹤實(shí)驗(yàn)。固定后熒光保留良好,可存檔反復(fù)觀察。
【解決的實(shí)驗(yàn)問(wèn)題】
問(wèn)題一:傳統(tǒng)順行示蹤劑標(biāo)記方向單一
許多經(jīng)典示蹤劑(如 PHA-L、BDA)主要實(shí)現(xiàn)順行標(biāo)記,難以回答"哪些腦區(qū)投射到此處"的問(wèn)題。G180 提供逆向視角的補(bǔ)充方案。
問(wèn)題二:病毒示蹤劑耗時(shí)長(zhǎng)、操作復(fù)雜
病毒載體(如 rabies、HSV)需要數(shù)天至數(shù)周的擴(kuò)增表達(dá)周期,且涉及生物安全等級(jí)要求。G180 注射后數(shù)天即可檢測(cè),無(wú)需病毒操作設(shè)施。
問(wèn)題三:熒光染料擴(kuò)散范圍大、定位不準(zhǔn)
游離熒光染料(如 Fluoro-Gold、DAPI 等)注射后易沿針道或組織間隙擴(kuò)散,標(biāo)記邊界模糊。G180 微球顆粒大、擴(kuò)散受限,注射位點(diǎn)緊湊,標(biāo)記精度更高。
問(wèn)題四:信號(hào)持續(xù)時(shí)間不足
部分染料在固定或包埋過(guò)程中熒光嚴(yán)重衰減。G180 微球熒光穩(wěn)定,兼容甲醛/多聚甲醛固定、蔗糖沉糖、OCT 包埋、冰凍切片及后續(xù)免疫組化染色。
問(wèn)題五:多色示蹤光譜串?dāng)_
在雙色或多色實(shí)驗(yàn)中,不同示蹤劑的光譜重疊會(huì)導(dǎo)致通道串?dāng)_。G180 的綠色熒光與紅色 Retrobeads 光譜分離良好,可在同一張切片上清晰區(qū)分兩種標(biāo)記群體。
問(wèn)題六:注射操作不便
部分示蹤劑為干粉形式,需自行配制且濃度難以控制。G180 為即用型液體,濃度均一,注射體積可控,重復(fù)性好。
【使用方法】
以下為典型的大鼠腦內(nèi)注射操作流程,研究者可根據(jù)實(shí)際實(shí)驗(yàn)方案進(jìn)行調(diào)整。
步驟一:準(zhǔn)備工作
· 從 4°C 冰箱取出 G180,室溫平衡 10–15 分鐘
· 渦旋混勻 10 秒,確保微球均勻懸浮
· 如需要稀釋,使用提供的稀釋液或 0.01 M PBS(pH 7.4)
· 準(zhǔn)備立體定位儀、微量注射器(建議 1–10 µl 規(guī)格)、 30–33 G 注射針頭
步驟二:動(dòng)物麻醉與固定
· 按機(jī)構(gòu)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)的方案實(shí)施麻醉
· 將動(dòng)物固定于立體定位儀,保持頭部穩(wěn)定
· 常規(guī)消毒手術(shù)區(qū)域
步驟三:開(kāi)顱/暴露注射靶點(diǎn)
· 沿中線切開(kāi)頭皮,剝離骨膜
· 使用顱骨鉆在目標(biāo)坐標(biāo)處開(kāi)一小孔(直徑約 1–2 mm)
· 避免損傷硬腦膜及大腦皮層表面血管
步驟四:裝載示蹤劑
· 用微量注射器吸取適量 G180 懸浮液
· 排出氣泡,確認(rèn)針尖有液體流出
· 記錄裝載體積
步驟五:緩慢注射
· 將針頭緩慢下降至目標(biāo)深度(典型速度 0.5–1 mm/min)
· 到達(dá)靶點(diǎn)后,以緩慢恒速注射(典型速率 0.1–0.5 µl/min)
· 大鼠常用注射體積:0.2–1.0 µl/位點(diǎn)
· 小鼠常用注射體積:0.05–0.3 µl/位點(diǎn)
· 注射完畢后留針 5–10 分鐘,以減少回流
步驟六:拔針與縫合
· 以緩慢速度(約 1 mm/min)拔出針頭
· 縫合頭皮切口,消毒傷口
· 將動(dòng)物置于溫暖環(huán)境中蘇醒
步驟七:存活期
· 典型存活時(shí)間:注射后 3–14 天(依實(shí)驗(yàn)?zāi)康亩ǎ?/span>
· 較短存活期(3–5 天)適合快速運(yùn)輸實(shí)驗(yàn)
· 較長(zhǎng)存活期(7–14 天)適合長(zhǎng)距離逆向運(yùn)輸或稀疏投射研究
· 期間正常飼養(yǎng),觀察動(dòng)物狀態(tài)
步驟八:灌注固定與切片
· 深度麻醉動(dòng)物,經(jīng)心臟灌注生理鹽水沖洗血液
· 灌注 4% 多聚甲醛(PFA)固定組織
· 取腦,后置固定于 4% PFA 中 4–24 小時(shí)
· 轉(zhuǎn)移至 20%–30% 蔗糖溶液沉糖至組織沉底
· 冰凍切片(典型厚度 30–50 µm),貼片于載玻片
步驟九:封片與觀察
· 使用含 DAPI 的熒光封片劑封片(便于復(fù)染細(xì)胞核)
· 蓋玻片封固,指甲油封邊
· 熒光顯微鏡下使用 FITC/GFP 濾光片組觀察綠色熒光
· 激發(fā)光 480 nm,發(fā)射光 520 nm
· 拍照記錄,注意控制曝光時(shí)間以避免光漂白
【常見(jiàn)問(wèn)題與解決方案】
問(wèn)題一:熒光信號(hào)弱或檢測(cè)不到
· 可能原因:注射體積不足、存活時(shí)間過(guò)短、注射位點(diǎn)偏離目標(biāo)、 微球未充分混勻、顯微鏡濾光片不匹配
· 解決方案:增加注射體積至推薦范圍上限;延長(zhǎng)存活期至 7 天以上;確認(rèn)立體定位坐標(biāo)準(zhǔn)確性;注射前充分渦旋;確認(rèn)使用FITC/GFP 通道觀察
問(wèn)題二:背景自發(fā)熒光高
· 可能原因:醛類固定劑(特別是戊二醛)產(chǎn)生組織自發(fā)熒光、封片劑含熒光雜質(zhì)、切片過(guò)厚
· 解決方案:使用低自發(fā)熒光的封片劑;如必須含醛固定,可嘗試處理切片以降低醛類自發(fā)熒光;控制切片厚度在30–40 µm
問(wèn)題三:注射位點(diǎn)擴(kuò)散范圍過(guò)大
· 可能原因:注射速度過(guò)快、注射體積過(guò)大、針頭口徑過(guò)粗、留針時(shí)間不足
· 解決方案:降低注射速率至 0.1 µl/min 以下;減少注射體積;使用更細(xì)的針頭(32–33 G);延長(zhǎng)留針時(shí)間至 10 分鐘
問(wèn)題四:熒光信號(hào)快速淬滅
· 可能原因:觀察時(shí)激發(fā)光過(guò)強(qiáng)、暴露時(shí)間過(guò)長(zhǎng)、未使用抗淬滅封片劑
· 解決方案:使用抗熒光淬滅封片劑(如含 DABCO 或ProLong Gold 的產(chǎn)品);降低激發(fā)光強(qiáng)度;縮短單次曝光時(shí)間;盡快拍照存檔
問(wèn)題五:微球堵塞針頭
· 可能原因:微球濃度過(guò)高、針頭過(guò)細(xì)、懸浮液靜置過(guò)久產(chǎn)生沉降
· 解決方案:注射前充分渦旋并間歇振蕩;可使用適當(dāng)稀釋的懸浮液;避免靜置超過(guò) 30 分鐘;必要時(shí)更換更大口徑針頭
問(wèn)題六:陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)量少
· 可能原因:靶區(qū)神經(jīng)末梢密度低、投射通路稀疏、運(yùn)輸距離過(guò)長(zhǎng)、動(dòng)物品系差異
· 解決方案:增加注射位點(diǎn)數(shù)量(多點(diǎn)注射);延長(zhǎng)存活期;適當(dāng)增大注射體積;參考同類文獻(xiàn)確認(rèn)預(yù)期標(biāo)記強(qiáng)度
問(wèn)題七:免疫組化染色效果不佳
· 可能原因:固定過(guò)度導(dǎo)致抗原表位遮蔽、抗體濃度不當(dāng)、通透步驟不充分
· 解決方案:控制固定時(shí)間在 4–24 小時(shí)內(nèi);優(yōu)化抗體滴定;使用 0.3% Triton X-100 通透 30 分鐘;進(jìn)行抗原修復(fù) 處理
問(wèn)題八:與其他熒光標(biāo)記串?dāng)_
· 可能原因:濾光片帶寬過(guò)寬、多色標(biāo)記光譜重疊
· 解決方案:使用窄帶濾光片;合理安排多色實(shí)驗(yàn)的通道分配;采集時(shí)分離通道逐一拍照后合成
【注意事項(xiàng)】
1. 本產(chǎn)品僅供科研使用(For Research Use Only),不得用于臨床診斷或治療
2. 操作時(shí)請(qǐng)佩戴防護(hù)手套、護(hù)目鏡及實(shí)驗(yàn)服
3. 避免吸入氣溶膠或接觸皮膚、黏膜
4. 如懸浮液不慎接觸皮膚,立即用大量清水沖洗
5. 嚴(yán)禁冷凍保存,冷凍會(huì)導(dǎo)致微球不可逆聚集
6. 每次取用前務(wù)必渦旋混勻,確保微球均勻分散
7. 建議使用低自發(fā)熒光的試劑和耗材,以降低背景干擾
8. 熒光觀察時(shí)盡量縮短曝光時(shí)間,延長(zhǎng)樣本可觀察壽命
9. 不同批次間熒光強(qiáng)度可能存在微小差異,建議同一實(shí)驗(yàn)組使用同一批次產(chǎn)品
10. 廢棄樣本及耗材請(qǐng)按照實(shí)驗(yàn)室生物廢棄物處理規(guī)范處置
【參考文獻(xiàn)】
1. Katz LC, Iarovici DM. Green fluorescent latex microspheres: a new retrograde tracer. Neuroscience. 1990;34(2):511-520.
2. Lanciego JL, Wouterlood FG. A half century of tracing neuronal connections with horseradish peroxidase and fluorescent substances. J Chem Neuroanat. 2011;42(4):157-161.
3. Schmued LC, Fallon JH. Fluoro-Gold: a new fluorescent retrograde axonal tracer with numerous unique properties. Brain Res. 1986;377(1):147-154.
4. Wessendorf MW. Fluoro-Gold: composition, stability and suitability for retrograde labeling. J Neurosci Methods. 1991;38(1-2):1-17.
5. Veenman CL, Reiner A, Honig MG. Biotinylated dextran amine as an anterograde tracer for single- and double-labeling studies. J Neurosci Methods. 1992;41(3):239-254.
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